TY  - GEN
A1  - Engel, M.
A1  - Tippkötter, Nils
T1  - Einfluss eines Phenazin-Mediators und elektrischen Potenzials auf die Aceton-Butanol-Ethanol-Fermentation
T2  - Chemie Ingenieur Technik
N2  - In den letzten Jahren haben nachhaltige, biotechnologische Prozesse zunehmend an Bedeutung gewonnen. Die Aceton-Butanol-Ethanol-Fermentation (ABE-Fermentation) mit dem anaeroben Bakterium Clostridium acetobutylicum zur Gewinnung von Biobutanol könnte in diesem Zusammenhang eine Möglichkeit der nachhaltigen Kraftstoffproduktion darstellen. In dieser Arbeit wird der Einfluss zusätzlich verfügbarer Elektronen durch den Einsatz des Phenazin-Farbstoffs Neutralrot als Redoxmediator sowie das Anlegen eines elektrischen Potenzials während der ABE-Fermentation untersucht. Es wird gezeigt, dass das Neutralrot keinen Einfluss auf die Leerlaufspannung von ca. 500 mV vs. Ag/AgCl während der Fermentation hat. Der Mediator bewirkt allerdings eine frühere Butanolbildung sowie höhere Butanolkonzentrationen. Wird zudem die Mediatorkonzentration von 125 mM auf 250 mM angehoben, wird dabei auch die maximale Butanolkonzentration um 36 % ± 1,8 % innerhalb von28 Stunden gesteigert.
Y1  - 2016
U6  - https://doi.org/10.1002/cite.201650105
SN  - 0009-286X
SN  - 1522-2640 (eISSN)
N1  - ProcessNet-Jahrestagung 2016 und 32. DECHEMA-Jahrestagung der Biotechnologen 2016, 12. - 15. September 2016, Eurogress Aachen
VL  - 88
IS  - 9
SP  - 1254
PB  - Wiley-VCH
CY  - Weinheim
ER  - 
TY  - JOUR
A1  - Goßmann, Matthias
A1  - Frotscher, Ralf
A1  - Linder, Peter
A1  - Bayer, Robin
A1  - Epple, U.
A1  - Staat, Manfred
A1  - Temiz Artmann, Aysegül
A1  - Artmann, Gerhard
T1  - Mechano-pharmacological characterization of cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells
JF  - Cellular physiology and biochemistry
N2  - Background/Aims: Common systems for the quantification of cellular contraction rely on animal-based models, complex experimental setups or indirect approaches. The herein presented CellDrum technology for testing mechanical tension of cellular monolayers and thin tissue constructs has the potential to scale-up mechanical testing towards medium-throughput analyses. Using hiPS-Cardiac Myocytes (hiPS-CMs) it represents a new perspective of drug testing and brings us closer to personalized drug medication. Methods: In the present study, monolayers of self-beating hiPS-CMs were grown on ultra-thin circular silicone membranes and deflect under the weight of the culture medium. Rhythmic contractions of the hiPS-CMs induced variations of the membrane deflection. The recorded contraction-relaxation-cycles were analyzed with respect to their amplitudes, durations, time integrals and frequencies. Besides unstimulated force and tensile stress, we investigated the effects of agonists and antagonists acting on Ca²⁺ channels (S-Bay K8644/verapamil) and Na⁺ channels (veratridine/lidocaine). Results: The measured data and simulations for pharmacologically unstimulated contraction resembled findings in native human heart tissue, while the pharmacological dose-response curves were highly accurate and consistent with reference data. Conclusion: We conclude that the combination of the CellDrum with hiPS-CMs offers a fast, facile and precise system for pharmacological, toxicological studies and offers new preclinical basic research potential.
KW  - Inotropic compounds
KW  - Pharmacology
KW  - Ion channels
KW  - CellDrum
KW  - Heart tissue culture
KW  - Induced pluripotent stem cells
KW  - Cardiac myocytes
Y1  - 2016
U6  - https://doi.org/10.1159/000443124
SN  - 1421-9778 (Online)
SN  - 1015-8987 (Print)
VL  - 38
IS  - 3
SP  - 1182
EP  - 1198
PB  - Karger
CY  - Basel
ER  -